一篇读懂 | 揭秘外泌体:从基础机制到前沿应用

lyw 166 2026-02-14 14:45:36

 

 

 

三十年前,科学家在网织红细胞的培养液中首次发现了一种微小囊泡,彼时它还被简单归为 “细胞代谢废物的转运工具”;而三十年后的今天,这个被命名为 “外泌体” 的纳米级结构,已一跃成为生命科学领域的研究热点 —— 既是液体活检中新型生物标志物的 “潜力股”,更是无细胞治疗领域的关键突破口。

这个直径仅几十纳米的 “小家伙”,究竟藏着怎样的秘密?它的形成机制、分离鉴定手段,以及在医学领域的前沿应用,今天将带您全面了解外泌体的研究脉络。

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外泌体的形成及构成

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外泌体的 “身份界定”:

外泌体(Exosome)属于细胞外囊泡(Extracellular Vesicles, EV)家族中的重要成员,其核心特征是由脂质双分子层包裹形成的微小囊泡结构,直径通常处于 40-100nm 区间。

(注:不同研究中对其直径的界定范围略有差异,30-200nm 为更宽泛的参考区间,40-100nm 则是目前较为常用的标准)

 

从成分来看,外泌体的膜结构主要由脂质与蛋白质构成,内部则包裹着丰富的生物活性物质 —— 除蛋白质外,还包含DNA、mRNA、microRNA、ncRNA 等多种核酸分子。

 

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外泌体的 “诞生之旅”:

外泌体的形成是一个高度有序的细胞内过程,其 “生命周期” 可大致分为三个阶段:


· 第一步:细胞质膜向内凹陷,形成早期内体(Early Endosome)—— 这是外泌体诞生的 “初始车间”;


· 第二步:早期内体的膜结构进一步向内凹陷、出芽,逐渐形成包含多个小囊泡的 “多泡体”(Multivesicular Body),此时外泌体的雏形已在其中孕育;


· 第三步:多泡体与细胞膜发生融合,将内部的小囊泡释放到细胞外环境中,最终形成我们所定义的 “外泌体”。

 

在这一系列过程中,供体细胞会将自身的胞质内容物 “精准打包” 进外泌体,随后通过胞吐作用将其分泌至细胞外;而释放到胞外的外泌体,则能通过 “受体 - 配体相互作用” 的方式,与靶细胞特异性结合,完成生物信息与物质的传递。

 

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外泌体的蛋白“分子图谱”:

由于外泌体的形成机制与来源细胞的类型、生理状态密切相关,其尺寸、内容物、功能均呈现出显著的 “异质性”—— 不仅不同类型细胞分泌的外泌体组分存在差异,即便同一类型细胞分泌的外泌体,也可能因所处环境不同而有所区别。

 

不过,在外泌体的蛋白质组成上,仍能总结出一定规律。从分布与功能来看,外泌体蛋白主要包括以下几类:

 

膜相关蛋白:

如整体外泌体膜蛋白、内外周膜蛋白、脂质锚定外膜蛋白、脂质锚定内膜蛋白等,是维持外泌体结构稳定的核心;

功能活性蛋白:

如外围表面蛋白、外泌体酶,以及广泛存在的细胞骨架蛋白、代谢酶、信号转导分子等,参与外泌体的信号传递与功能发挥;

特征性标记蛋白

如热激蛋白(HSP70、HSP90)、四次跨膜蛋白(CD9、CD63、CD81、CD82)等,这些蛋白虽并非外泌体所独有,但在多数外泌体中稳定存在,成为识别外泌体的重要参考。

需要特别说明的是,目前已发现的外泌体蛋白中,多数也存在于其他类型的细胞外囊泡中(包括一些常被提及的 “外泌体标志物”,如热激蛋白、flotillins、MHC 分子等);仅有 CD9、CD63、CD81、TSG101、Alix 等少数标志物被认为具有相对特异性。因此,单独依靠蛋白质检测,只能作为外泌体鉴定的 “必要条件”,而非 “充分条件”。

 

02

外泌体的分离与鉴定

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外泌体的分离与富集:

要研究外泌体,首先需从体液或细胞培养液等复杂基质中将其分离富集,目前常用的方法可分为传统技术与新兴技术两类:

 

传统方法

包括差速超速离心法(通过多次离心分离不同密度的颗粒)、密度梯度超速离心法(利用密度介质实现更精准的分层)、过滤法、超滤法(通过膜孔径筛选特定尺寸颗粒)、超滤与超速离心结合法,以及商业化试剂盒提取法等;

 

新兴技术

随着技术发展,微珠捕获法(利用特异性抗体或配体修饰微珠,靶向结合外泌体)、微流控芯片技术(通过微通道设计实现高效分离)、热泳技术等也逐渐应用于外泌体的富集,显著提升了分离的效率与便捷性。

 

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外泌体的鉴定:

分离富集后,还需通过多维度鉴定,才能确认所获得的组分是否为目标外泌体。如前文所述,单一的蛋白质检测不足以完成鉴定,国际细胞外囊泡研究协会(ISEV)建议,需结合至少两种外泌体的特征性指标进行验证,具体包括以下三个层面:

 

蛋白质层面分析

ISEV 明确建议,需通过蛋白质印迹技术(Western blot)检测三类蛋白,以证明外泌体的特征:

 

· 阳性标志物A:跨膜或 GPI 锚定蛋白,如 CD63、CD9、CD81 等,这类蛋白与质膜或内体相关,是外泌体的典型特征;

 

· 阳性标志物B:胞质蛋白,如 TSG101、HSP70、ALIX 等,这类蛋白在囊泡形成过程中被 “包裹” 进入外泌体;

 

· 阴性标志物:其他胞内细胞器的特征蛋白,如核蛋白 Histone、Lamin A,内质网蛋白 calnexin,高尔基体蛋白 GM130,线粒体蛋白 cytochrome c,以及细胞骨架蛋白 cytokeratin 18 等,通过检测这些蛋白的 “缺失”,可排除其他细胞器污染。

 

其中,CD63、CD9、CD81、TSG101、HSP70、HSP90、ALIX 是目前最常用的外泌体阳性标志物。

 

形态表征分析

通过透射电子显微镜(TEM)、扫描电子显微镜(SEM)、冷冻电子显微镜(cryo EM)、原子力显微镜(AFM)等技术,可直接观察外泌体的形态特征 —— 在电镜视野下,外泌体多呈现圆形或杯状结构,大小通常在 40-150nm 范围内,这是其区别于其他囊泡的重要形态学依据。

 

粒径分布分析

通过动态光散射(DLS)技术、纳米颗粒跟踪分析(NTA)、可调电阻脉冲传感(TRPS)等方法,可测定外泌体的粒径分布,其典型范围为 40-150nm,与形态学观察结果相互印证。

 

注:由于目前的分离技术尚无法获得 100% 纯的外泌体,ISEV建议将所提取的直径小于 200nm 的囊泡统称为 “小细胞外囊泡(small extracellular vesicle,sEV)”,这一概念已被越来越多的科研论文与期刊所接纳。

 

03

外泌体的功能与应用

 

外泌体作为细胞间天然的 “信息与物质载体”,既能携带核酸、蛋白质、脂质等生物活性分子在细胞间传递信号,又因广泛分布于体液中、稳定性强,在生理病理研究与医学应用中展现出巨大潜力,主要体现在以下两个方向:

 

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外泌体作为肿瘤液体活检的新前沿:

癌症是全球范围内导致死亡的主要原因之一,传统的组织活检因侵入性强、样本获取困难,在早期诊断与动态监测中存在局限;而液体活检(包括循环肿瘤细胞、循环肿瘤 DNA、外泌体检测)因无创、易重复等优势,逐渐成为研究热点。

 

外泌体之所以被认为是液体活检中最具潜力的生物标志物,源于其三大特性:

 

内容物特异性

 外泌体携带的核酸、蛋白质等成分,能反映亲本细胞的生理病理状态,为疾病诊断提供 “分子线索”;

 

结构稳定性

脂质双分子层的保护,使其在复杂体液环境中不易被降解,便于检测;

 

含量丰富

体液中存在大量外泌体,样本获取难度低,适合常规检测。

 

目前已有多项研究证实,外泌体的多种成分可作为癌症早期诊断与预后评估的潜在标志物:

 

· 非小细胞肺癌:研究发现,患者血液中外泌体 miRNA-21、miRNA-378、miRNA-139、miRNA-200 的表达水平与健康人群存在显著差异,为非小细胞肺癌的早期诊断提供了新的候选标志物 [7];

 

· 肝癌:外泌体 miRNA-21 在肝癌患者中表达上调,且能抑制肝癌细胞凋亡;此外,外泌体蛋白 CEA、GPC-3 等可有效区分肝癌患者与健康人群,有望成为无创诊断的重要指标;

 

· 胃癌:外泌体 miRNA-15b-3p 在胃癌组织、细胞系及血清中均高表达,血清中的该分子不仅可作为胃癌诊断与预后的标志物,还可能为精准靶向治疗提供依据 [8];

 

· 乳腺癌:作为女性癌症相关死亡的主要原因,乳腺癌细胞分泌的外泌体 miRNA-21、miRNA-222、miRNA-200c 可在体液中被定量检测,为疾病诊断提供参考 [9];

 

· 结直肠癌:全球癌症相关死亡的第二大原因,患者血清中外泌体 CircRNA-0004771 表达上调,可用于区分 I、II 期患者与良性肠道疾病人群;此外,miRNA-15b、miRNA-21、miRNA-31 的高表达也具有潜在诊断价值 [10,11];

 

· 胰腺癌:外泌体 miRNA-10b 是公认的胰腺癌进展相关指标,而富集于肿瘤来源外泌体的 GPC1 蛋白(GPC1+crExos),能特异性区分胰腺癌患者与良性胰腺疾病或健康人群,对早期诊断意义重大 [12];

 

· 前列腺癌:相比传统的 PSA 标志物,外泌体 ephrinA2 能更精准地区分前列腺癌与前列腺增生;同时,患者血清外泌体中 EpCAM、PSMA 的表达升高,也为诊断提供了补充指标 [13,14]。

 

2

外泌体作为无细胞治疗的新兴方案:

外泌体不仅是疾病诊断的 “信号兵”,还因自身的天然特性,成为无细胞治疗领域的 “潜力股”。作为一种天然的纳米级囊泡,它相比细胞或人工合成载体(如脂质体),具有不可替代的优势:低免疫原性(源于自身细胞,不易引发排斥反应)、高生物耐受性、强组织通透性(可穿透生物屏障)、可通过表面修饰实现靶向递送,且来源广泛、易于获取。

 

目前的研究已证实,从树突细胞、成纤维细胞、间充质干细胞等多种细胞中分离的外泌体,能通过不同机制发挥治疗作用:

 

功能调控:

如树突细胞来源的外泌体可呈递新抗原,激活免疫应答;间充质干细胞来源的外泌体可调节免疫微环境,促进组织修复;

 

药物递送:

外泌体可作为 “天然载体”,负载小分子药物、核酸等,通过受体介导的内吞、网格蛋白包被小窝、脂筏、吞噬作用等方式进入靶细胞,实现精准治疗。

 

 

例如,间充质干细胞来源的小细胞外囊泡(MSC-sEV)不仅能模拟亲代细胞的再生功能,且安全性与生物相容性更高,可促进靶细胞功能恢复 [16];通过改造使其负载 si-RCP 核酸后,还能获得缺氧适应性,突破生理性低氧微环境的屏障,直达椎间盘并发挥治疗作用,为椎间盘退变疾病提供新策略 [17]。

 

此外,巨噬细胞来源的外泌体可直接负载紫杉醇(PTX),发挥抗肿瘤功效 [18];更值得关注的是,这类外泌体还能穿透血脑屏障,将脑源性神经营养因子(BDNF)递送至脑部,为中枢神经系统疾病的治疗开辟新路径 [19]。

 

从最初被视为 “垃圾转运车”,到如今成为生命科学与医学领域的研究焦点,外泌体的 “逆袭” 之路,映射着微小生物结构的巨大潜力。作为细胞间的 “纳米信使”,它在疾病诊断、治疗中的应用前景已初露锋芒,而随着研究的不断深入,相信这一微小囊泡还将为肿瘤等疑难杂症的诊疗带来更多突破性进展。

 

参考文献

1. Yu D, Li Y, Wang M, Gu J, Xu W, Cai H, Fang X, Zhang X. Exosomes as a new frontier of cancer liquid biopsy. Mol Cancer. 2022:21(1):56.

2. D.Michiel Pegtel and Stephen J. Gould . "Exosomes ." Annual Review of Biochemistry. 2019: 88:487-514. 

3. Yu LL, Zhu J, Liu JX, Jiang F, Ni WK, Qu LS, Ni RZ, Lu CH, Xiao MB. A Comparison of Traditional and Novel Methods for the Separation of Exosomes from Human Samples. Biomed Res Int. 2018 Jul 26;2018:3634563.

4. Li J, Liu K, Liu Y, Xu Y, Zhang F, Yang H, et al. Exosomes mediate the cell-to-cell transmission of IFN-α-induced antiviral activity. Nat Immunol. 2013:14(8):793-803.

5. Hade MD, Suire CN, Suo Z. Mesenchymal Stem Cell-Derived Exosomes: Applications in Regenerative Medicine. Cells. 2021 Aug 1;10(8):1959.

6. Li X, Wang W, Chen J, et al. The potential role of exosomal miRNAs and membrane proteins in acute HIV-infected people. Front Immunol. 2022:13:939504.

7. Wu W, Yu X, Wu J, Wu T, Fan Y, Chen W, et al. Surface plasmon resonance imaging-based biosensor for multiplex and ultrasensitive detection of NSCLC-associated exosomal miRNAs using DNA programmed heterostructure of Au-on-Ag. Biosens Bioelectron.2021:175:112835.

8. Wei S, Peng L, Yang J, Sang H, Jin D, Li X, et al. Exosomal transfer of miR-15b-3p enhances tumorigenesis and malignant transformation through the DYNLT1/Caspase-3/Caspase-9 signaling pathway in gastric cancer. J Exp Clin Cancer Res. 2020:39:32.

9. Lee JU, Kim WH, Lee HS, Park KH, Sim SJ. Quantitative and specific detection of exosomal miRNAs for accurate diagnosis of breast cancer using a surface-enhanced Raman scattering sensor based on plasmonic head-flocked gold nanopillars. Small. 2019:15:e1804968.

10. Pan B, Qin J, Liu X, He B, Wang X, Pan Y, et al. Identification of serum exosomal hsa-circ-0004771 as a novel diagnostic biomarker of colorectal cancer. Front Genet. 2019:10:1096.

11. Han L, Shi W-J, Xie Y-B, Zhang Z-G. Diagnostic value of four serum exosome microRNAs panel for the detection of colorectal cancer. World J Gastrointest Oncol. 2021:13:970–9.

12. Melo, S., Luecke, L., Kahlert, C. et al. Glypican-1 identifies cancer exosomes and detects early pancreatic cancer.  Nature .2015:523(7559): 177-182.

13. Li S, Zhao Y, Chen W, Yin L, Zhu J, Zhang H, et al. Exosomal ephrinA2 derived from serum as a potential biomarker for prostate cancer. J Cancer. 2018:9:2659–65.

14. Zhou Y-G, Mohamadi RM, Poudineh M, Kermanshah L, Ahmed S, Safaei TS, et al. Interrogating circulating microsomes and exosomes using metal nanoparticles. Small (Weinheim an der Bergstrasse, Germany).2016:12:727–32.

15. Kalluri R, LeBleu VS. The biology, function, and biomedical applications of exosomes. Science. 2020 Feb 7;367(6478):eaau6977.

16. Rahmani A, Saleki K, Javanmehr N, Khodaparast J, Saadat P, Nouri HR. Mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicle-based therapies protect against coupled degeneration of the central nervous and vascular systems in stroke. Ageing Res Rev. 2020 Sep;62:101106.

17. Tong B, Liao Z, Liu H, Ke W, Lei C, Zhang W, Liang H, Wang H, He Y, Lei J, Yang K, Zhang X, Li G, Ma L, Song Y, Hua W, Feng X, Wang K, Wu X, Tan L, Gao Y, Yang C. Augmenting Intracellular Cargo Delivery of Extracellular Vesicles in Hypoxic Tissues through Inhibiting Hypoxia-Induced Endocytic Recycling. ACS Nano. 2023 Feb 14;17(3):2537-2553.

18. Kim MS, Haney MJ, Zhao Y, Mahajan V, Deygen I, Klyachko NL, Inskoe E, Piroyan A, Sokolsky M, Okolie O, Hingtgen SD, Kabanov AV, Batrakova EV. Development of exosome-encapsulated paclitaxel to overcome MDR in cancer cells. Nanomedicine. 2016 Apr;12(3):655-664.

19. Yuan D, Zhao Y, Banks WA, Bullock KM, Haney M, Batrakova E, Kabanov AV. Macrophage exosomes as natural nanocarriers for protein delivery to inflamed brain. Biomaterials. 2017 Oct;142:1-12.


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